摘要

芯片器官(OOAC)是十大新興技術之一，指的是建立在微流控芯片上的生理器官仿生系統。通過細胞生物學、工程學和生物材料技術的結合，芯片的微環境在組織界面和機械刺激方面模擬了器官的微環境。這反映了人體組織的結構和功能特征，并可以預測對包括藥物反應和環境影響在內的一系列刺激的反應。OOAC在精準醫學和生物防御策略中有著廣泛的應用。本文介紹了OOAC的概念，并從不同器官的角度綜述了OOAC在生理模型構建、藥物開發、毒理學等方面的應用。我們進一步討論了存在的挑戰，并對其應用提供了未來的展望。

背景

微流體學是一門精確操縱和處理微尺度流體的科學技術。它通常用于精確控制微流控(10?9到10?18 L)流體，使用的通道大小從幾十微米到幾百微米，被稱為“芯片實驗室”。微通道很小，但具有較大的表面積和高傳質能力，有利于其在微流控技術應用中的應用，包括試劑使用量低、體積可控、混合速度快、響應快以及物理化學性質的精確控制。微流控集樣品制備、反應、分離、檢測和細胞培養、分選和細胞裂解等基本操作單元于一體，出于這些原因，人們對OOAC的興趣增強了。OOAC結合了一系  列化學、生物和材料科學學科，并被世界經濟論壇選為“十大新興技術”之一。
OOAC是一種仿生系統，可以模擬生理器官的環境，具有調節關鍵參數的能力，包括濃度梯度、剪切力、細胞構型、組織邊界和組織-器官相互作用。OOAC的主要目標是模擬人體器官的生理環境。
人體生理學是研究人體及其器官系統功能的科學。這對于我們理解人體的功能障礙和發病機制具有重要意義，因此與醫學、藥物開發和毒理學領域密切相關。研究人類生理學最相關和最直接的方法是研究人體或模型生物的活體實驗。身體的功能依賴于許多較低層次的組成部分的相互作用和適應，如組織、細胞、蛋白質和基因。因此，僅僅通過活體研究來揭示生理現象的潛在機制是具有挑戰性的。此外，藥物開發和毒理學需要評估數千種化合物的生理效應。由于體內測試的低通量的限制，生物學家使用體外細胞培養。細胞培養是指細胞在受控環境中的生長和維持。幾十年來，傳統的二維(2D)細胞培養系統形成了生命科學研究的重要平臺。利用2D系統，通過培養細胞或細胞產品來研究各種細胞的功能。然而，2D系統不能準確地模擬活體組織/器官、器官內相互作用和微環境因素的生理表現，通常需要在活體動物模型中進行驗證。由于物種差異，動物實驗往往無法復制人體實驗，而且由于高昂的成本和倫問題，使用動物作為藥物測試的模型受到了審查。在臨床前試驗中，對人體組織環境的不充分描述可能導致對整體組織功能的綜合影響的不準確預測。OOAC旨在通過提供更多生理模型系統來克服這些缺點。OOAC被認為是未來實驗動物模型的替代技術。
本文介紹了OOAC技術的最新進展，并對其在細胞生物學評價中的應用前景進行了討論。

器官芯片的設計理念和關鍵部件

設計理念

培養系統需要控制細胞內外環境。OOAC與微加工和細胞生物學相結合，可以控制外部參數并準確模擬生理環境。芯片上需要動態機械應力、流體剪切和濃度梯度。細胞圖案化也應該實現，以充分反映生理過程。

流體剪切力
      微流體可以通過微泵灌流實現細胞的動態培養，這有助于營養物質的管理和廢物的及時排放。細胞所處的動態環境比靜態培養更接近體內條件。此外，流體剪應力還會引起器官的極性。重要的是，OOAC通過激活細胞表面分子和相關的信號級聯，對內皮細胞的正常生物功能施加必要的物理壓力。同樣，在OOAC設備中加入液體可以在單個器官層面進行生物學評估。OOAC系統總結了通過芯片上簡單的“搖桿”流體運動，或通過更復雜的可編程的“脈動”格式的流動，為組織特定的配置安排在單個循環中。

濃度梯度
      在微觀尺度上，流體主要以層流形式流動，導致生化分子的穩定梯度，在空間和時間上都受到控制。由濃度梯度驅動的各種生化信號存在于生物現象中，包括血管生成、侵襲和遷移。微流體通過微閥和微泵改變流量和通道幾何形狀，模擬人體內復雜的生理過程，從而實現穩定的三維生化濃度梯度。

動態機械應力

正常的日常器官壓力包括血壓、肺壓和骨壓。這些壓力在維持骨骼肌、骨骼、軟骨和血管等機械應力組織方面發揮著重要作用。微流體使彈性多孔膜能夠產生周期性的機械應力。這種機械刺激被認為是生理過程中分化的關鍵決定因素。

細胞構圖
       人體的組織需要復雜有序的多個細胞的排列，以形成一個功能完整的全身相互作用。微流體控制細胞構型，用于構建復雜幾何結構的體外生理模型。表面修飾、模板和3D打印有助于芯片上的單元圖案化。3D打印方法允許形成具有復雜通道的水凝膠支架，從而實現多尺度細胞圖案化。3D打印的優勢是允許用戶定義的數字面具提供細胞圖案的多功能性，這對于體外重建細胞微環境至關重要。Li等人。開發了使用受控的拓撲操作在玻璃芯片上實現快速異型細胞圖案化的方法。這種方法在一塊玻璃芯片上結合了聚醋酸乙烯酯涂層、二氧化碳激光消融和連續細胞種子技術。這種方法可以實現受控的上皮-間充質相互作用。此外，具有類似特性的間充質細胞也可以在玻璃片上圖案化。該方法可用于皮膚上皮-間充質相互作用的大規模研究和藥物檢測，也可用于其他細胞的圖案化。

關鍵組件
       OOAC涉及四個關鍵組成部分，包括(1)微流體；(2)活細胞組織；(3)刺激或藥物輸送；以及(4)傳感器。微流控部件是指使用微流控將靶細胞輸送到預先指定的位置，并且包括在培養過程中的培養液輸入和廢液排放系統。通常，該組件的特點是小型化、集成化和自動化。活細胞組織組件是指在2D或3D系統的情況下空間對準特定細胞類型的組件。3D排列通常是通過添加水凝膠等生物兼容材料來創建的。這些材料可以防止機械損傷，并形成立體排列。盡管與2D模型相比，3D組織結構更準確地模擬了體內的情況，但由于技術和成本的限制以及細胞外基質的組裝和血管系統的預置和形成，器官組織中的活細胞大多仍是在2D模型中培養的。對于某些組織，需要物理或化學信號來模擬生理微環境，從而促進微組織的成熟和功能。例如，電刺激可以幫助心肌組織成熟。不同的信號刺激可用于藥物篩選方法，用于檢測和編譯數據的傳感組件可以是嵌入式傳感輸出組件或基于透明芯片的視覺功能評估系統。使用自動化系統對多細胞OOAC進行成像，產生詳細的細胞表型和用于測量的統計模型。凱恩等人。開發了一種在3D微流體環境中監測細胞的細胞系統。這些檢測以延時成像顯微鏡為特色，通過質量控制來評估細胞的電活動。一個有意義的芯片上人細胞模型，如果沒有微型傳感器對系統中特征點的代謝狀態的讀取，就無法描述和訪問。

新興的OOAC技術

肝臟OOAC
       肝臟系統是藥物/毒素代謝的主要部位。肝臟由一系列復雜的肝小葉組成，這些小葉提供多細胞功能通訊。在較長的時間內維持肝細胞的生理學是具有挑戰性的。凱恩等人設計了第一個基于肝臟的系統，該系統由微流控微孔組成，其中3T3-J2成纖維細胞和大鼠肝細胞共培養以模擬呼吸道界面(圖1)。在芯片中培養的大鼠肝細胞可以持續穩定地合成白蛋白并進行代謝。Lee等人設計了一種反映內皮細胞和培養的原代肝細胞間質結構的芯片，在縫隙外灌入培養液。這種可滲透的內皮間隙將以索狀結構為基礎的肝細胞隔開，允許它們與外部血竇區域分離，同時保持有效的物質交換。Ho等人使用電泳法產生的徑向電場梯度將細胞圖案化到圓形聚二甲基硅氧烷(PDMS)芯片上。這些新技術模擬了肝臟小葉的結構。Hegde等人制作了一個2層芯片，該芯片使用多孔的聚對苯二甲酸乙二醇酯(PET)膜分離通道，并通過上腔將膠原和纖維連接蛋白磨碎的大鼠原代肝細胞連續灌流到下通道中。

基于DLM的單芯片肝臟腫瘤示意圖。A：從天然肝臟制備DLM溶液；B: 設備各種組件(頂部和底部、頂部和底部微通道、PET膜、進氣口和出氣口)及其各自尺寸的3D示意圖

為了改進生理模型，微流控芯片采用了3D肝細胞培養技術。Ma等人制作了肝臟球體原位灌流的仿生平臺。Yum等人生產了研究肝細胞如何影響其他類型細胞的系統，高通量檢測是用來評估肝細胞藥物毒性的。Riahi等人生產了微流控電化學芯片免疫傳感器，用于檢測肝臟毒性過程中產生的生物標志物。Chong等人通過評估代謝物的產生和抗原提呈細胞(APC)的激活，制作了監測藥物皮膚致敏的化驗。該系統具有作為藥物篩選平臺的價值，以識別產生全身皮膚反應的化合物。盧等人通過將脫細胞肝基質(DLM)與明膠甲基丙烯酰基(GelMA)相結合來反映三維腫瘤微環境(TME)，開發了仿生肝腫瘤。該系統為未來的一系列抗癌藥理研究提供了改進的疾病模型。此外，還測試了一些疾病或受傷狀態。康等人使用他們的系統分析了乙肝病毒的病毒復制。周等人開發了一個用于模擬酒精損傷的系統。在代謝組學、蛋白質組學、基因組學和表觀基因組分析中對培養細胞質的進一步表征將有助于改善這些研究的功能結果。

肺器官芯片
肺內的氣體交換由肺泡調節，肺泡在體外繁殖可能是一種挑戰。微流體可以通過精確的流體流動和持續的氣體交換來建立體外肺模型和肺病理。目前的研究主要集中在呼吸道機械壓力的調節、血-血屏障(BBB)和剪切力對病理生理過程的影響。哈等人制作了芯片上肺模型，使用軟光刻技術將芯片分成多個區域，這些區域由帶有細胞外基質的10μm PDMS膜分隔。PDMS上部有肺泡上皮細胞，而下部有人肺微血管內皮細胞，因此模擬了肺泡-毛細血管屏障。在真空下改變膜的結構，以模擬呼吸過程中肺泡的擴張/收縮。炎癥刺激通過中性粒細胞進入系統，中性粒細胞被傳遞到液體通道。這通過引入白細胞介素2(IL-2)產生了肺水腫的病理模型。這突顯了OOAC模型在改進當前體內分析方面的效用。

肺器官芯片：A，利用間隔的PDMS微通道，在涂有ECM的多孔柔性PDMS膜上形成了肺泡-毛細血管屏障。該裝置通過真空復制呼吸運動，導致機械拉伸和形成肺泡-毛細血管屏障；B吸入后，隔膜收縮，降低胸膜壓力。肺泡-毛細血管界面因肺泡張力而拉伸；C裝置發育：血漿暴露后，上下通道之間的多孔膜不可逆轉地結合；D PDMS穿過通道一側，然后在真空壓力下被移除。E設備的實際圖像

2015年，Stucki等人報告了一個模仿肺實質的肺芯片。該系統包括一個肺泡屏障和模擬呼吸的3D循環應變，代表了第一個模擬呼吸的彈性膜擴張模型。Blume等人制作了3D呼吸道培養模型，模擬了通過液體和介質交換的肺間質流動。這使得對上皮屏障進行更深入的生理學研究成為可能。該模型使用帶有可滲透過濾器的支架作為單個組織培養腔，并結合多個腔以提高集成度。在芯片肺中，在通過微流體系統模擬肺氣液界面和呼吸擴張的同時，可以對肺泡和連接的毛細血管施加壓力，提供剪切流分布。這逼真地模擬了肺部環境。Humayun等人在水凝膠膜的不同側培養呼吸道上皮細胞和平滑肌細胞，以評估其作為生理模型的適宜性。該系統與微環境線索和毒素暴露相結合，作為慢性肺部疾病的生理模型。Yang等人制備了聚(乳酸-乙醇酸)(PLGA)電紡納米纖維膜，作為細胞支架的芯片基質。鑒于該系統的簡便性，它適用于肺腫瘤的精確治療，并強調了組織工程的方法。
      肺組織器官芯片作為植入式呼吸輔助裝置很有用。彭等人設計了肺輔助裝置(LAD)，允許早產兒在呼吸衰竭期間在胎盤中進行額外的氣體交換。在臍動脈和靜脈中實現了大口徑通道的概念，為LAD提供了高水平的體外血流。這增加了效用，因為臍血管擴張閾值的臨床試驗是不道德的。這項研究首次系統地量化了導管擴張對臍帶血管的損害。Dabaghi等人采用雙面送氣方式對微流控血液氧合器進行了微細加工，以改善氣體交換。與單面裝置相比，攝氧量增加到343%。Xu等人使用微流控芯片平臺模擬肺癌細胞系和原代癌細胞的微環境，并測試不同的化療藥物。最近的另一項研究在“芯片上的小氣道”模型中模擬哮喘。利用人類哮喘和慢性阻塞性肺疾病的呼吸道模型，測試了治療方法，并概括了芯片模型對類似治療的體內反應。

腎臟OOAC
      腎臟負責維持藥物的滲透壓排泄。腎毒性導致不可逆轉的腎濾過喪失，凸顯了藥物篩選系統的必要性。濾過和重吸收發生在由腎小球、腎被膜和腎小管組成的腎單位。微流體可以模擬支持腎小管細胞生長的流體環境，并為維持細胞極性提供多孔膜支持。
Jang等人制造了第一個多層微流控系統(圖3A)，其中使用小鼠腎臟髓質集合管細胞來模擬腎濾過。該裝置提供了一個仿生環境，通過促進細胞骨架重組和分子運輸來響應激素刺激，增強內髓集合管的極性。2013年，同樣的微流控設備被用于培養人的原代腎上皮細胞。這是對原代腎臟細胞的第一次毒性研究。該設備能夠以傳統細胞培養或動物模型所不可能的方式，直接可視化和定量分析完整腎小管的各種生物學過程，并可能被證明有助于研究腎臟功能和疾病的基本分子機制。

A:腎小管芯片。PDMS通道、多孔膜和PDMS儲存庫的夾層組裝B通道可以復制腎小球的尿腔和毛細血管腔。多孔柔性PDMS膜可以用來功能化蛋白層粘連蛋白，以模擬腎小球基底膜。可以通過對柔性PDMS膜的真空拉伸來產生對細胞層的循環機械壓力

傳統細胞培養系統的缺點是，細胞分化為功能細胞需要延長培養時間和外部信號檢測系統，Musah等人描述了在器官培養設備中誘導多能干細胞來源的足細胞形成人腎小球芯片(圖3B)的方法。這些模擬了腎小球毛細血管壁的結構和功能，這是以前使用的方法不可能做到的。該芯片適用于腎毒性評估、治療開發、再生醫學以及腎臟開發和疾病。Sakolish等人在人體近端小管和腎小球中制造了一種可重復使用的微流控芯片，使腎上皮細胞能夠在各種條件下生長。剪切力會引起腎毒性。Schutgen等人設計了穩定的小管培養系統，允許擴展擴張和人體腎組織分析。基于該系統，開發了一個多用途的原代腎上皮細胞培養模型，使快速和個性化的分子和細胞分析、疾病建模和藥物篩選成為可能。陶等人]提出了一種從人誘導的多能干細胞中產生人胰島類器官的有效策略。該策略適用于以干細胞為基礎的有機工程和再生醫學的一系列應用。

心臟器官芯片
       心血管死亡是人類死亡的主要原因。微流體的出現使心臟組織的體外仿生研究成為可能。心肌是心臟的主要組成部分。心肌細胞(CM)的搏動可用于直接評估藥物效果，并與心臟搏動直接相關。2012年，Grosberg等人用聚二甲基硅氧烷(PDMS)制成具有表面紋理的彈性膜，并將新生大鼠CMS植入膜上形成肌膜。隨著CMS的收縮，肌肉膜向一側卷曲。通過測量這種卷曲的程度，可以分析PDMS膜上細胞收縮能力的大小的差異。該實驗系統既適用于單一肌膜的檢測，也適用于高通量的自動化多平板檢測。隨后，在2013年，張等人利用水凝膠在PDMS模型中制備自組裝心肌片。CMS來源于分化后的心肌。微器官組織芯片是從3D打印技術中生產出來的，它允許心肌和血管系統的整合。該模型利用血管內皮細胞形成血管網絡，并在血管網絡縫隙中加入CMS。該器官芯片為心血管相關藥物提供了一個篩選平臺。

張等人介紹了一種使用高速阻抗檢測來評估心臟藥物療效的單芯片心臟裝置。該設備記錄CMS的收縮，以揭示藥物效應。該芯片代表了對藥物心臟療效的臨床前評估。Marsano等人建立了模擬CMS生理和機械環境的心臟器官平臺(圖4)。直接進行可視化和定量分析，這在傳統的細胞培養或動物模型中是不允許的。該平臺代表了該領域的進步，并提供了標準的功能3D心臟模型。這使該設備成為一個創新和低成本的篩選平臺，以提高體外模型的預測能力。施耐德設計了方便高效的芯片，可以在受控環境中基于人類誘導的多能干細胞生成心臟組織。在延長的時間內維持心肌組織的活性和功能，并對詳細的時空脈動動力學進行光學檢測。該平臺可用于各種生物醫學應用。此外，Tzatzalos等人報告稱，HiPSC-CMS可代表健康和疾病特異性CMS評估擴張型心肌病藥物療效的無限潛力。藥物開發方面的這些進展對心血管組織具有重要影響，因為心臟毒性經常出現在藥物試驗中，這是臨床試驗暫停或藥物退出市場的主要原因之一。

3D心臟器官芯片，采用兩個獨立的PDMS微室。CM位于中央通道中以形成3D構造，而介質通過側通道被替換；B：隔室的下端被加壓以使PDMS膜變形并壓縮3D結構。壓縮被轉化為施加到3D單元結構上的單軸應變；C:PDMS層被對準并不可逆地結合。培養腔中存在上層，驅動腔代表下層；D:3D插圖；E: 真實芯片；F:芯片橫截面的掃描電鏡圖像

腸道器官芯片
      口服藥物必須橫穿小腸才能進入血液，絨毛是吸收的關鍵，它們的形態必須在芯片上保持。Imura等人開發了模擬腸道系統的芯片，由玻璃玻片透膜和含有通道的PDMS片組成。在芯片上培養Caco-2細胞。Sung等人制造了第一個模擬人類腸道絨毛的3D水凝膠結構。Kim等人生產的仿生設備(圖5)，通過剪切力和循環應變重建腸道微環境。Caco-2細胞表現出較長的生長時間，并保持了人體腸道中的微生物菌群。腸道的復雜結構和生理學為藥物篩選以及腸道微生物群、炎細胞和蠕動相關的機械變形在腸道疾病中的作用提供了一個平臺。該設備允許探索腸道疾病的病因，并確定治療目標和藥物。這項研究展示了芯片上的腸在針對腸道細胞的個性化藥物研究中的潛力。

A：芯片上腸道設備的插圖；B: 該設備由透明的PDMS彈性體組成的圖像；C: 通道的橫斷面圖和顯示多孔膜頂視圖的正方形插圖；D: 芯片上培養的腸道單層示意圖(上圖和相襯圖像(下圖)加(左)或減(右)機械應變(30%)；箭頭指示方向)。E: 壓力定量

腸細胞單獨培養或與包括HUVECs在內的內皮細胞培養,基因組的保真度很低，所以芯片模仿了腸道功能。Kasendral等人結合腸道組織工程和OOAC技術建立人十二指腸的體外生物學模型。培養在芯片中的腸上皮細胞來自內窺鏡活檢或器官切除。這個芯片代表了最接近真實的十二指腸的模型，并復制了小腸的關鍵特征。最近的發現加強了我們對腸道微生物組和腸道形態的了解。

多器官芯片
      一系列的生理途徑需要持續的介質循環和組織間的相互作用，單一器官芯片不能充分反映器官功能的復雜性、功能變化和完整性。“多器官芯片”，也被稱為“人體芯片”同時構建了多個器官，引起了明顯的研究關注。多器官芯片上同時培養不同器官和組織的細胞，這些細胞通過通道(仿生血管)連接起來，實現多器官整合，允許檢查相互作用以建立系統。這些方法可分為靜態、半靜態和隨機方法。靜止的多個器官被集成到單個連接的設備中。在半靜態系統中，器官通過流體網絡與基于Transwell?的組織嵌入物連接。在靈活的系統中，各個特定器官的平臺使用靈活的微通道相互連接。在這樣的系統中，靈活的機制是有利的，并且重建了多個器官。雖然多器官芯片的概念還處于起步階段，但已經取得了重大突破，包括兩個器官、三個器官、四個器官和十器官芯片的設計。

2010年，Van等人是第一個在微流控裝置中將肝臟和腸道結合在一起的人。腸和肝臟切片在芯片上發揮作用，并展示了其對器官相互作用的適用性，包括調節膽汁酸合成。這一系統使體外研究成為可能，并為器官之間的相互作用提供了觀察點。自那以后，更多的器官被集中在單個芯片上。器官芯片需要保持穩定的液體連接，避免細菌污染，并在整個培養過程中監控細胞活性。隨著芯片上器官數量的增加，系統的復雜性也會增強，不可避免地會導致不可預測的結果。簡化現有系統對于實現更廣泛的應用至關重要。Lee等人制造的無泵、用戶友好的單芯片多器官，易于組裝和操作。Satoh等人報道了一種在微板大小的氣動壓力驅動介質循環平臺上形成的多吞吐量多器官芯片系統(圖6)。該系統具有多個多器官培養單元同時運行、微流控網絡設計靈活、移液管友好的液體處理界面、適用于微孔板中廣泛使用的實驗方案和分析方法等優點。這一多器官培養平臺將成為藥物發現的有利研究工具。

A: 多通道多器官平板系統；B: 包含4?×?4培養腔的培養裝置的投影，通過X-X‘截面的培養腔顯示；C: 用于8通道2器官系統和4通道4器官系統的微流控平板中的微流體網絡的設計。八通道雙器官系統和四通量四器官系統微流控板內微流控網絡的設計。閉合圓圈表示通向微流控板頂表面的孔的位置。暗區和淺陰區分別為深部和淺部微流控通道。綠線環繞的區域代表流通文化單位。藍色線條表示文化室的墻壁。出口周圍的紅色細線表示拉普拉斯閥門。D: 在雙器官系統中利用氣動壓力進行三維介質循環。紅色箭頭表示媒體流的方向

OOAC的持續發展依賴于設計、建模、可制造性和可用性方面的進步。Lantada發明了激光技術的創新組合。對人類間充質干細胞的評估證實了該技術的有效性，生成的芯片是透明的，便于成像程序。這種技術對大規模生產的芯片有益，并對能源、交通和航空航天行業具有實用價值。

干細胞工程
      生物組織的來源是OOAC設計中最重要的參數之一。干細胞無需組織活檢即可從人體中提取，根據定義，干細胞是任何能夠自我更新并具有分化為一種或多種特化細胞類型的細胞。最常見的類型包括胚胎干細胞(ESCs)、誘導多能干細胞(IPSCs)和成體干細胞(ASCs)。這些細胞可以作為OOAC的生物組織來源。最常見的人類ASCs是間充質干細胞(MSCs)，它是從成人組織中提取的多能干細胞[126]。骨髓間充質干細胞(BMSCs)通常來自骨髓或脂肪組織，由于它們易于從組織活檢中提取，因此成為一個有吸引力的選擇。由于其有限的分化能力，缺乏一致的衍生方案和明確的生物學反應，骨髓間充質干細胞在OOAC模型中的應用不如其多潛能的同類細胞。人類胚胎干細胞來源于胚泡或胚胎的內部細胞。

根據來源，它們的功能并不是單一的，并從三個胚層中的任何一個分化為任何類型的成體細胞。然而，人類胚胎干細胞必須來自人類胚胎，這在倫理上存在爭議，進而導致法規和限制。由于圍繞胚胎干細胞的倫理爭論和生產大量遺傳多樣性細胞系的技術困難，將人類胚胎干細胞應用于臨床試驗比將其用作治療藥物評估的疾病模型中的精確藥物替代品更困難。像胚胎干細胞一樣，間充質干細胞是多能的，可以從所有三個胚層分化出來。由于IPSCs來自成人組織，而不是胚胎組織，因此它們避免了與ESCs相關的倫理問題。在相同遺傳背景的細胞中，ESCs和IPSCs在基因表達水平、表面標記表達和形態方面沒有顯著差異。除了繞過倫理爭議，IPSCs相對于ESCs的另一個優勢是，它們可以從已知疾病表型的捐贈者那里獲得，這可以用于特定患者的疾病模型和藥物篩選。

器官芯片(OOAC)設備的組織來源

與細胞系和原代細胞一樣，胚胎干細胞(ESCs)、誘導多能干細胞(IPSCs)和成體干細胞(ASCs)可以分化并整合到微流控芯片中。該圖顯示了OOC設備中ESCs、ASCs、IPSCs、原始和組織活檢以及細胞系的優勢(白色)和局限性(黑色)。細胞系和原代細胞在卵母細胞中更為常見，因為它們通常表現出良好的生物反應特性。然而，細胞系不能代表正常的生理條件，原代細胞培養時間有限，質量不穩定。相比之下，干細胞很容易獲得，是一個無限的細胞來源。即使目前在分化和成熟方案方面存在限制，干細胞仍然是一項很有前途的技術，可以被整合到OOC設備中。

因為干細胞比許多原始細胞類型和組織活檢更容易獲得，而且它們比其他細胞系更具生理學代表性，很可能成為未來OOAC的主要組織來源(圖8)。繼續研究干細胞在芯片上分化為功能器官模型的方法將有助于干細胞方法的改進和OOAC技術的進步。

干細胞研究的未來趨勢，A: 系列組織，B：芯片上器官技術可以模擬體內的真實狀態

結論和未來展望

我們回顧了OOAC技術的最新進展。微流控芯片為OOAC的發展提供了良好的支持。它的發展引起了世界范圍內的研究關注，并取得了巨大的科學進步。已經設計和制備了大量的OOAC。人們已經研究了一系列人體器官。OOAC的最終目標是將眾多器官集成到一塊芯片中，并構建更復雜的多器官芯片模型，最終實現人體芯片。
盡管OOAC技術發展迅速，但人體芯片的理論仍然遙不可及。PDMS是最廣泛使用的材料，但也有缺點，因為生成的膜比體內的形態更厚。疏水小分子的吸光度降低會影響溶劑的效率和毒性。因此，有必要確定合適的替代材料。目前，制造和實驗實施的成本相對較高，不利于器官芯片的廣泛使用，因此零部件必須成本低、易于處置。更昂貴的組件應該可以重復使用。在集成系統組件方面，必須減小介質體積和連接器大小以供一般使用。在芯片上采集樣本可能會干擾其操作，導致各種代謝物的濃度發生變化。因此，需要更合適的傳感器。還需要適用于所有器官的通用細胞培養液。最關鍵的是，隨著芯片上器官數量的增加，功能變得更加復雜，產生的數據帶有虛假的和不可翻譯的風險。這是目前無法解決的問題。在長期重復給藥或芯片研究的情況下，體外確定的生物標記物可能不能完全反映體內的等效性。

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